心脏类器官如何构建?手把手教程来啦!
作者:Anna Katharina Schrattel – 海德堡大学医院,海德堡大学
类器官已成为生物医学研究中最有前景的工具之一。它们是由诱导多能干细胞(iPSCs)衍生的能够模拟器官特异性结构和功能的三维培养系统,因此在模型开发和疾病方面尤为重要。不同类型的心脏类器官在研究心脏发育、先天性心脏病、心脏毒性以及再生医学等方面,均展现出巨大的应用潜力。

图1 - hiPSC衍生的心脏类器官。类器官用DAPI和α平滑肌肌动蛋白(a-SMA)抗体染色,并用THUNDER转盘共聚焦显微成像系统成像。
此图由海德堡大学毒理学系的Lisa Gölz博士拍摄并慷慨提供。
一、心脏类器官有哪些类型?
类器官的种类持续拓展,主要包括自组装型心脏类器官、工程化心肌组织(EHT)以及器官芯片心脏模型。构建这类模型的细胞来源主要为干细胞,涵盖诱导多能干细胞(iPSCs)与胚胎干细胞。经重编程获得的诱导多能干细胞可分化为多种细胞类型,也可用于构建iPSC来源的类器官[1]。与传统二维单层细胞培养不同,心脏类器官具备多细胞复杂结构,包含心肌细胞、成纤维细胞及内皮细胞等,可自发节律性收缩,模拟心脏搏动。
二、心脏类器官是如何产生的?
心脏类器官有多种形态,对应的培养方案也各不相同。其共同特点是通过复杂分化过程调控信号通路,并构建支持性细胞微环境。图2为2023年文献报道的 hiPSC 三维心脏诱导方案。该模型可实现功能性心室心肌与心外膜的自组装,可形成具备功能的心室心肌与心外膜自组装结构,命名为心外膜类器官(epicardioid)[2],方案可根据实验室条件优化。

图2 - 将人诱导多能干细胞(hiPSCs)诱导成3D心脏类器官的实验流程示意图
- 必备材料
- 细胞:人诱导多能干细胞(hiPSC)
- 培养板:96孔透明圆底超低附着微孔板,配合共价键水凝胶。
- 培养基及添加剂:Essential 8培养基,青霉素/链霉素,EDTA(0.5 mM),PBS(不含钙镁离子)。
- 基础分化培养基成分:DMEM/F-12 + GlutaMAX,IMDM,脂质浓缩物,IMDM + 10% BSA,转铁蛋白,α-硫代甘油。
- 生长因子和小分子:BMP4,Activin A,bFGF,胰岛素,LY-29004,CHIR-99021,IWP2,维A酸(RA),VEGF165。
(二)实验操作流程
第一步:细胞制备
- 在Essential 8培养基+0.5%青霉素/链霉素中培养hiPSCs,至汇合度~70–80%。
- 每4天使用含5 mM EDTA的PBS(不含钙镁离子)给细胞传代。可选:接种细胞时加入2 µM Thiazovivin(ROCK抑制剂),以提高细胞消化解离后的存活率。
- 第1天:在Essential 8培养基中加入2 µMThiazovivin,以每孔10000个hiPSCs的密度接种至超低吸附U型96孔板中。
第二步:中胚层的诱导
- 准备含DMEM/F-12 + GlutaMAX、IMDM、脂质、转铁蛋白、BSA和α-硫代甘油的基础培养基。
- 第0天:添加BMP4(10 ng/mL)、Activin A(50 ng/mL)、bFGF(30 ng/mL)、LY-29004(5 μM)、CHIR-99021(1.5 μM)。
第三步:分化为心脏中胚层
- 第2天:使用添加胰岛素(10 µg/mL)、BMP4(10 ng/mL)、bFGF(8 ng/mL)、IWP2(5 µM)的基础培养基,视情况添加 5 μM RA。
- 第6–7天:更换为含胰岛素、BMP4和bFGF的基础培养基,以促进心外膜分化与心肌成熟。
- 第8天起:使用添加胰岛素(10 µg/mL)的维持培养基,视情况添加 VEGF(100 ng/ml)。
备注:BMP4与Activin A用于诱导中胚层及心脏祖细胞特化;bFGF用于促进祖细胞增殖;CHIR99021通过激活Wnt信号通路诱导早期中胚层形成;LY-29004用于抑制PI3K并精细调控分化信号。
第四步:培养维持与血管生成诱导(可选)
更换为心肌细胞维持培养基(CDM:BDM培养基+胰岛素),可选择性添加VEGF(100 ng/mL)以诱导血管形成。采用半量换液方式进行培养,并辅以低速轻柔摇床培养(40 rpm),以改善营养交换、促进类器官生长。
第五步:功能鉴定与应用
- 可通过免疫荧光染色、qPCR或转录组测序等方法,对细胞分化效果进行检测与评估。
- 该类器官模型可用于疾病建模、药物筛选及心脏发育机制研究等方向。
(三)培养技巧
- 类器官形成监测、传代与扩增
- 包埋培养第3天起,每日在显微镜下观察类器官的结构形成与生长状态。
- 每2~3天更换新鲜维持培养基。
- 当类器官生长至适宜大小(50 μm~1000 μm,个体差异较大)时,将其切割为小组织块或采用机械法分离。
- 重新包埋于新鲜凝胶中,继续培养。
- 生长因子
稳定提供心脏特异性信号是培养关键。高纯度重组蛋白(如HumanKine® VEGF、FGF2、BMP4等)可有效促进心肌分化与血管模拟。
- 细胞外基质(ECM)
使用Matrigel等基质胶或可调刚度的合成水凝胶等细胞外基质模拟物,可促进类器官的自组装及形成适宜的组织张力。
- 质量控制检测
- 采用肉眼观察、显微视频分析或力学传感器等方式,对心肌收缩能力进行定性或定量评估。
- 用心肌特异性标志物(cTnT、ACTN2、NKX2-5)进行免疫荧光染色。
- 通过qPCR检测相关基因表达水平。
- 利用钙成像或多电极阵列进行心肌功能鉴定。
三、心脏类器官的应用
迄今为止,心脏类器官已被应用于多个研究领域,包括心脏发生发育机制模拟[3]、遗传性与非遗传性心脏病模型构建[4]、药物筛选与检测[5],以及再生医学相关研究[6]。尤为重要的是,该模型可作为高度模拟的心脏病病理模型,用于心肌梗死、心肌纤维化、先天性心脏病及心律失常等疾病的研究[7,8]。
四、总结
综上所述,生长因子通过调节心肌细胞与内皮细胞间的平衡,在心脏类器官构建中发挥重要作用。例如,在三维类器官体系中添加FGF与VEGF,可促进内皮细胞与心外膜细胞生成,但心肌细胞占比会低于二维单层培养体系[4]。随着对更完善的心脏病造模系统的需求日益增长,精准调控各类细胞信号对稳定制备心脏类器官至关重要。
Proteintech可提供:
- HumanKine®生长因子——用于类器官生成
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靶标 |
货号 |
适用物种 |
表达体系 |
SCI文献 |
是否提供GMP级别 |
|
Activin A |
human,mouse |
HEK293 |
34 |
✔ |
|
|
BMP-4 |
human,mouse |
HEK293 |
103 |
✔ |
|
|
FGFbasic-TS |
human,mouse |
HEK293 |
90 |
✔ |
|
|
VEGF165 |
human |
HEK293 |
54 |
✔ |
|
|
Wnt3A |
human,mouse |
HEK293 |
13 |
✔ |
- 高品质抗体——用于心脏类器官表征
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抗体靶点 |
货号 |
抗体类型 |
适用应用 |
适用物种 |
SCI文献 |
|
ACTN2 |
兔多抗 |
WB, IHC, IF/ICC, IF-P, IF-Fro, IP, ELISA |
canine,chicken,human,mouse,rat |
37 |
|
|
小鼠单抗 |
WB, IHC, ELISA |
Human,mouse,pig,rabbit,rat |
2 |
||
|
重组兔单抗 |
WB, IHC, IF-P, ELISA |
Human,Mouse,Rat |
0 |
||
|
Cardiac Troponin I |
兔多抗 |
WB, IHC, IF-P, IP, ELISA |
human,mouse,rat |
48 |
|
|
小鼠单抗 |
WB, IHC, IF-P, ELISA, ISFET |
human,mouse,pig,Rabbit,rat |
24 |
||
|
重组兔单抗 |
WB, IHC, IF-P, ELISA |
Human,Mouse,Rat |
- |
||
|
Cardiac Troponin T |
兔多抗 |
WB, IHC, IF/ICC, IF-P, IF-Fro, ELISA |
canine,human,mouse,pig,rat,zebrafish |
102 |
|
|
小鼠单抗 |
WB, IHC, IF/ICC, IF-P, ELISA |
chicken,Human,mouse,pig,rabbit,rat |
19 |
||
|
重组兔单抗 |
WB, IHC, IF-P, ELISA |
Human,Mouse,Pig,Rat |
- |
||
|
NKX2-5 |
兔多抗 |
WB, IHC, IF-P, ELISA |
human,mouse,rat |
14 |
参考文献:
- Rowe, R.G. and G.Q. Daley. Induced pluripotent stem cells in disease modelling and drug discovery. Nature Reviews Genetics, 2019. 20(7): p. 377-388.
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- Ghosheh, M., A. Ehrlich, K. Ioannidis, M. Ayyash, I. Goldfracht, M. Cohen, A. Fischer, Y. Mintz, L. Gepstein, and Y. Nahmias. Electro-metabolic coupling in multi-chambered vascularized human cardiac organoids. Nature Biomedical Engineering, 2023. 7(11): p. 1493-1513.